細菌、真菌混合快檢試劑盒使用說明書(定量PCR法)
基于TaqMan探針熒光定量PCR原理的檢測方案:選擇細菌(金黃色葡萄球菌、生孢梭菌、枯草牙孢桿菌、銅綠假胞桿菌)和真菌(白色念珠菌和黑曲霉)基因中特異基因片段,分別設(shè)計引物和熒光探針,快速檢測4種細菌和2種真菌的基因組DNA。
結(jié)合相關(guān)的樣本前處理和DNA抽提方案,本試劑盒可以檢測各類生物制品和細胞培養(yǎng)物中潛在的金黃色葡萄球菌、生孢梭菌、枯草牙孢桿菌、銅綠假胞桿菌、白色念珠菌和黑曲霉污染。 靈敏:配合推薦使用的核酸抽提方案,檢測靈敏度達到10CFU/mL。
可靠:抽提加入內(nèi)標核酸,全過程質(zhì)量控制。
穩(wěn)定:全程閉管操作,無交叉污染。
快捷:單管可同時檢測6種菌種,檢測效率高。
準確:樣本設(shè)置3重復(fù),避免假陰、陽性的出現(xiàn)。
規(guī)定儲存條件下6個月。
-20 ℃取出后,可避光存放于4 ℃繼續(xù)使用1周。
表1 產(chǎn)品組分
注:
1、Bacterial&Fungus Positive Control含4種細菌DNA、2種真菌DNA和內(nèi)標DNA。
2、Internal Standard含有內(nèi)標DNA。
在實驗前請完整閱讀本說明書,務(wù)必重視注意事項和無菌操作規(guī)范!
(1) 樣本的標準制備方案:請配合使用高效無微生物污染的DNA抽提試劑盒提取樣本DNA。整個過程需要遵守?zé)o菌操作規(guī)范。本公司目前推薦抽提試劑盒見附錄2。直接取20 μL待測樣本DNA,作為模板進行 qPCR 反應(yīng)。
(2) 前處理陰性樣本準備方案:將RNase Free Water當成樣本,加入內(nèi)部質(zhì)控(Internal standard),進行核酸抽提。
(1) 根據(jù)所要檢測樣品的數(shù)量,計算所需反應(yīng)孔數(shù),每個樣本做3個重復(fù)孔。
反應(yīng)孔數(shù)=1個陽性PCR質(zhì)控 PC +1個陰性PCR質(zhì)控+1個樣本前處理陰性質(zhì)控+樣本數(shù)× 3
(2) 根據(jù)反應(yīng)孔數(shù)計算所需的 Mix 總量(需有1孔的加樣損失量):
Mix =(反應(yīng)孔數(shù)+1)×10μL
(3) 各試劑放室溫融化,并根據(jù)下表所示準備 qPCR Mix:
表2 qPCR Mix的配制
(1)震蕩混勻 qPCR Mix,低速離心,將管蓋殘留液體收集至管底。
(2)向每孔反應(yīng)管中分裝 10 μL qPCR Mix。
(3)向反應(yīng)管中加入樣品后短暫離心,加樣示例如下:
表 3 加樣示例
【注】:此時每個反應(yīng)孔的體積為30μL
PCR 儀設(shè)置以 ABI 7500 為例,相對定量模式,選擇
TaqMan 探針法:
注: 1、該程序為兩階段擴增法,如熒光定量PCR儀可以兩階段收集熒光,按照正常Ct值判斷結(jié)果;如果只能最后一步收集熒光,需要在原數(shù)據(jù)的基礎(chǔ)上加15個Ct值。
2、ROX設(shè)置是以7500為例,也存在例外,例如StepOne。
以ABI 7500 為例,擴增曲線選擇 log 法,基線設(shè)置1~2 個循環(huán)。建議用 log 法擴增曲線保證結(jié)果穩(wěn)定可靠。
如果陽性對照管的細菌(FAM)和真菌(HEX)Ct 值均>31,但陽性對照管及陰性對照管的內(nèi)參(CY5)Ct 值正常,表明陽性對照模板有降解。
如果樣品前處理陰性(CY5)Ct 值>32,陽性對照管的內(nèi)參(CY5)Ct 值>31 ,表明內(nèi)參DNA存在降解或PCR體系擴增效率下降。
根據(jù)細菌(FAM) Ct 值、真菌(HEX) Ct 值、內(nèi)標(CY5) Ct 值判定,具體標準如下:
注:結(jié)果判讀
1. 要求每個檢測樣品做3重復(fù),如果3復(fù)孔中,兩重復(fù)為陽性,則判讀為陽性。
2. 建議做樣本前處理陰性,可以質(zhì)控整個抽提過程。
3. 如果待測樣本反應(yīng)中僅有FAM和CY5通道有擴增,表明存在細菌污染,若要進一步確認是何種細菌污染,推薦使用細菌檢測試劑盒(貨號:BD01和BD02)。
4. 如果待測樣本反應(yīng)中僅有HEX和CY5通道有擴增,表明存在真菌污染,若要進一步確認是何種真菌污染,推薦使用細菌檢測試劑盒(貨號:FD01)。
注:檢測結(jié)果異常時
5. 樣品前處理陰性:內(nèi)參Ct值過大,表明抽提效率低;細菌和真菌檢測通道Ct值小于37,可能前處理抽提過程存在污染。
6. qPCR陰性:細菌檢測通道 Ct 值小于37,操作過程存在污染。
7. 樣本前處理處理陰性質(zhì)控 PCR陰性質(zhì)控內(nèi)參差±1個 Ct 值屬于正?,F(xiàn)象。
由于 PCR 反應(yīng)非常靈敏,實驗操作中應(yīng)注意以下事項,以免發(fā)生DNA 污染:
1、試劑盒開啟后,陽性對照應(yīng)與試劑 Mix、陰性對照分開存放。
2、每個組分在使用前都應(yīng)先低速離心后小心開啟。使用時請上下輕柔顛倒十次混勻,避免起泡,并低速短暫離心后使用。
3、要求核酸抽提和qPCR過程都符合無菌操作規(guī)范。
4、建議自備轉(zhuǎn)運盒,用于將配制分裝好的Mix從配置Mix超凈工作臺轉(zhuǎn)運到加樣超凈工作臺。
5、建議在 qPCR 反應(yīng)板上陽性對照的排布應(yīng)遠離待測樣本和陰性對照。
6、建議 qPCR 配置與分裝在一個無菌操作臺,樣本的加樣在另外一個無菌操作臺。
7、建議使用不同的移液器添加陽性對照與待測樣本、陰性對照,并使用帶濾芯的槍頭進行加樣。
8、應(yīng)按照先加陰性,再加樣本,最后加陽性的順序加樣。且陽性用專門的加樣器。建議陽性在專門的無菌操作臺加樣。
9、qPCR 反應(yīng)板封膜或蓋蓋子時須反復(fù)壓緊。
10、上機擴增前,反應(yīng)管短時低速離心,將管壁液體收集至管底。
11、蓋上反應(yīng)管蓋子或者貼上光學(xué)膜后,為避免影響熒光信號讀取,請注意不要在管蓋或者膜上做標記,或者用刮板反復(fù)摩擦。
注:適用熒光定量PCR 儀為迄今為止我們客戶配備的定量儀器品牌型號,如您的熒光定量 PCR 儀不在我們列出的范圍,也歡迎聯(lián)系我們,申請試用。
無菌操作規(guī)范
1、除高速離心機外,其他設(shè)備和耗材應(yīng)放在無菌操作臺中,保證無菌。
2、樣本高速離心后,要對離心管噴酒精,并用棉球擦拭離心管外壁,同時更換干凈的板架和新手套。
3、實驗前用75%酒精擦凈臺面及四周,放好需用的實驗器材及各種溶液,并用酒精棉球擦拭,更換干凈的管架。
4、對著桌面,空間噴灑酒精,然后將超凈工作臺通風(fēng)機打開,超凈工作臺和紫外燈打開 30~45 分鐘,再將無菌室紫外燈打開 30~45 分鐘后關(guān)閉,再通風(fēng) 15 分鐘。關(guān)閉紫外,拉開小一半隔離,用酒精棉球擦拭超凈工作臺桌面2遍,關(guān)上隔離。
5、進入無菌室操作前,雙手及在操作臺內(nèi)手臂部分用75%的酒精擦拭消毒。穿專用工作服、帽及拖鞋、口罩,應(yīng)放在無菌室緩沖間,工作前經(jīng)紫外線消毒后使用。
6、無菌室溫度宜控制在 18~28℃,濕度在 45%~65%(溫濕度計應(yīng)該用無水的)。
7、從槍頭盒中取出槍頭時,尖部不能觸及外露部位及離心管和管架邊。
8、操作盡量在酒精燈前操作。打開離心管前,酒精燈灼燒鑷子,待冷卻后用鑷子開關(guān)管蓋。
9、操作中,不能在樣品上方翻轉(zhuǎn)瓶蓋,袖口不能掠過樣品上方。
10、實驗完畢,清潔臺面。
11、實驗者在實驗后用肥皂清洗雙手。
12、換下的專用實驗服,進行紫外線,一次性鞋套額帽子扔進垃圾桶。
13、用畢,再開紫外燈消毒 30分鐘。
14、無菌室和緩沖間定期大掃除,保持整潔。
15、定期檢查紫外燈燈管。每隔兩周需用酒精棉球輕輕擦拭,除去上面灰塵和油垢,以減少紫外線穿透的影響。如燈管發(fā)黑,超過使用期限,及時更換紫外燈管。
2、注意事項
(1)工作臺面上,禁止存放不必要的物品,以保證工作區(qū)域內(nèi)的潔凈氣流不受干擾。
(2)禁止在工作臺面上記錄,工作時應(yīng)盡量避免作明顯擾亂氣流的動作。(3)根據(jù)環(huán)境潔凈度,每 3~6 個月將中效過濾器中的濾料拆下清洗。一般情況下,當無紡布濾料容納塵埃較多、表面發(fā)黑時即可拆下進行清洗,或者予以更換。
(4)風(fēng)機轉(zhuǎn)速調(diào)至最大時,仍不能達到所需要的風(fēng)速時(即風(fēng)速≤0.2m/s),則必須更換高效空氣過濾器。